Везде

ОФФизиология человека Human Physiology

  • ISSN (Print) 0131-1646
  • ISSN (Online) 3034-6150

Взаимосвязь уровней гормонов и численности микроорганизмов вагинального биотопа у женщин в эксперименте с 5-суточной “сухой” иммерсией

Вы можете
Код статьи
S3034615025010103-1
DOI
10.7868/S3034615025010103
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Комиссарова Д. В.
  • Аффилиация: ФГБУН ГНЦ РФ — Институт медико-биологических проблем РАН
Том/ Выпуск
Том 51 / Номер выпуска 1
Страницы
110-122
Аннотация
Целью данной работы является изучение взаимосвязи уровней гормонов и численности микроорганизмов вагинального биотопа у женщин в эксперименте с 5-суточной “сухой” иммерсией (СИ). В исследовании принимали участие 6 женщин в возрасте от 25 до 40 лет. Продолжительность пребывания в СИ составила 5 сут. В течение всего эксперимента испытуемые использовали ежедневно на ночь 1 вагинальную капсулу, содержащую аутологичные лактобациллы в титре 10*7 КОЕ/мл (вспомогательные вещества — магния стеарат – 3 мг, лактоза моногидрат – достаточное количество до получения массы содержимого капсулы 400 мг). Участвующие в исследовании женщины принимали 1 раз в сутки утром, начиная с 1 дня СИ и в течение 30 сут после ее окончания, препарат на основе лактоферрина в количестве 400 мг. Для изучения состояния микрофлоры влагалища и цервикального канала были взяты пробы до начала эксперимента (“До”), через 5—7 дней (“После”) и через 34—36 дней (“После+34”) после окончания иммерсии. Забор крови для измерения количества эстрадиола и пролактина проводился в те же периоды, что и отбор вагинального биоматериала. Все три точки выпадали на 19—22 дни менструального цикла. Вагинальное содержимое и отделяемое цервикального канала засевали на селективные и неселективные агаризованные плотные питательные среды. Видовую идентификацию микроорганизмов проводили методом MALDI-TOF-MS анализа с использованием времяпролетного масс-спектрометра Microflex LT c программным обеспечением Maldi BioTyper (Bruker Daltoniks, Германия) версии 4.0. Концентрации эстрадиола и пролактина измеряли иммуноферментным методом с помощью коммерческих наборов (DBC, Канада) на планшетном иммуноферментном анализаторе Stat Fax 2100 (Awareness Technology, США). В результате проведенных исследований была выявлена взаимосвязь между уровнями пролактина и эстрадиола и некоторыми представителями микробиоты влагалища и цервикального канала. Наиболее чувствительными к уровням эстрадиола и пролактина являются представители семейства Lactobacillus spp. Кроме Lactobacillus spp на количество эстрадиола и пролактина влияют представители семейств Staphylococcus spp, Corynebacterium spp, а также B. bifidum и C. acnes. Таким образом, в условиях, имитирующих отдельные факторы космического полета, необходимо уделять пристальное внимание контролю гормонального статуса женщин – участниц эксперимента и поддержанию количества Lactobacillus spp в пределах нормы для предотвращения развития дисбиотических состояний влагалища и цервикального канала.
Ключевые слова
эстрадиол пролактин сухая иммерсия микрофлора влагалища
Дата публикации
03.02.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
41

Библиография

  1. 1. Farage M.A., Miller K.W., Sobel J.D. Dynamics of the vaginal ecosystem—hormonal influences // Infect. Dis. Res. Treat. 2010. V. 3. doi: 10.4137/IDRT.S3903
  2. 2. Gimunová M., Paludo A.C., Bernaciková M., Bienertova-Vaska J. The effect of space travel on human reproductive health: A systematic review // NPJ Microgravity. 2024. V. 10. № 1. P. 10.
  3. 3. Mathyk B., Imudia A.N., Quaas A.M. et al. Understanding how space travel affects the female reproductive system to the Moon and beyond // NPJ Womens Health. 2024. V. 2. P. 20. doi: 10.1038/s44294-024-00009-z
  4. 4. Kaur H., Merchant M., Haque M.M., Mande S.S. Crosstalk between female gonadal hormones and vaginal microbiota across various phases of women’s gynecological lifecycle // Front. Microbiol. 2020. V. 11. P. 551.
  5. 5. Ильин В.К., Комиссарова Д.В., Афонин Б.В. и др. Влияние приема пробиотиков в составе напитка брожения на микрофлору кишечника, слизистых оболочек и состояние желудочно-кишечного тракта человека // Авиакосм. и эколог. мед. 2022. Т. 56. № 3. С. 47.
  6. 6. Розанов И.А., Кузнецова П.Г., Савинкина А.О. и др. Психологическая поддержка на основе виртуальной реальности в эксперименте с трехсуточной “сухой” иммерсией // Авиакосм. и эколог. мед. 2022. Т. 56. № 1. С. 55.
  7. 7. Томиловская Е.С., Рукавишников И.В., Амирова Л.Е. и др. 21-суточная “сухая” иммерсия: особенности проведения и основные итоги // Авиакосм. и эколог. мед. 2020. Т. 54. № 4. С. 5.
  8. 8. Анкирская А.С., Муравьева В.В. Интегральная оценка состояния микробиоты влагалища. Диагностика оппортунистических вагинитов // Акушерство и гинекология: новости, мнения, обучение. 2020. Т. 8. № 1. С. 69.
  9. 9. Дзеранова Л.К., Воротникова С.Ю., Шутова А.С. и др. Лекарственно-индуцированная гиперпролактинемия: механизм развития, особенности диагностики и лечения // Ожирение и метаболизм. 2023. Т. 20. № 3. С. 251.
  10. 10. Rezaei Z., Adabi K., Feizabad E., Aliakbar M. The effect of probiotic supplementation in intrauterine sperm insemination pregnancy rate // Fertil. Gynecol. Androl. 2023. V. 3. № 1. P. e136798.
  11. 11. Kwaszewska A., Sobiś-Glinkowska M., Szewczyk E.M. Cohabitation-relationships of corynebacteria and staphylococci on human skin // Folia Microbiol. 2014. V. 59. № 6. P. 495.
  12. 12. Yuan Q., Huang R., Tang L. et al. Screening Biomarkers and Constructing a Predictive Model for Symptomatic Urinary Tract Infection and Asymptomatic Bacteriuria in Patients Undergoing Cutaneous Ureterostomy: A Metagenomic Next-Generation Sequencing Study // Dis. Markers. 2022. V. 2022. P. 7056517.
  13. 13. Gladysheva I.V., Cherkasov S.V., Khlopko Y.A., Plotnikov A.O. Genome characterization and probiotic potential of Corynebacterium amycolatum human vaginal isolates // Microorganisms. 2022. V. 10. № 2. P. 249.
  14. 14. Chen X., Zhao X., Chen L. et al. Vaginitis caused by Corynebacterium amycolatum in a prepubescent girl // J. Pediatr. Adolesc. Gynecol. 2015. V. 28. № 6. P. e165.
  15. 15. Доброхотова Ю.Э., Затикян Н.Г. Гормональный статус и микробиоценоз влагалища // Акушерство. Гинекология. Репродукция. 2008. № 3. С. 7.
  16. 16. Saidi N., Saderi H., Owlia P., Soleimani M. Anti-biofilm potential of Lactobacillus casei and Lactobacillus rhamnosus cell-free supernatant extracts against Staphylococcus aureus // Adv. Biomed. Res. 2023. V. 12. P. 50.
  17. 17. Davoodabadi A., Soltan Dallal M.M., Lashani E., Tajabadi Ebrahimi M. Antimicrobial activity of Lactobacillus spp. isolated from fecal flora of healthy breast-fed infants against diarrheagenic Escherichia coli // Jundishapur J. Microbiol. 2015. V. 8. № 12. P. e27852.
  18. 18. Banwo K., Alonge Z., Sanni A.I. Binding capacities and antioxidant activities of Lactobacillus plantarum and Pichia kudriavzevii against cadmium and lead toxicities // Biol. Trace Elem. Res. 2021. V. 199. № 2. P. 779.
  19. 19. Asan-Ozusaglam M., Gunyakti A. A new probiotic candidate bacterium from human milk: Limosilactobacillus vaginalis MA-10 // Acta Alimentaria. 2021. V. 50. № 1. P. 13.
  20. 20. Sung C., Kim B.G., Kim S. et al. Probiotic potential of Staphylococcus hominis MBBL 2–9 as anti-Staphylococcus aureus agent isolated from the vaginal microbiota of a healthy woman // J. Appl. Microbiol. 2010. V. 108. № 3. P. 908.
  21. 21. Gutiérrez-Barroso A., Anaya-López J.L., Lara-Zárate L. et al. Prolactin stimulates the internalization of Staphylococcus aureus and modulates the expression of inflammatory response genes in bovine mammary epithelial cells // Vet. Immunol. Immunopathol. 2008. V. 121. № 1–2. P. 113.
  22. 22. France M., Alizadeh M., Brown S. et al. Towards a deeper understanding of the vaginal microbiota // Nat. Microbiol. 2022. V. 7. № 3. P. 367.
  23. 23. Mirmonsef P., Hotton A.L., Gilbert D. et al. Free glycogen in vaginal fluids is associated with Lactobacillus colonization and low vaginal pH // PloS One. 2014. V. 9. № 7. P. e102467.
  24. 24. Clabaut M., Suet A., Racine P.J. et al. Effect of 17β-estradiol on a human vaginal Lactobacillus crispatus strain // Sci. Rep. 2021. V. 11. № 1. P. 7133.
  25. 25. Wagner R.D., Johnson S.J. Probiotic lactobacillus and estrogen effects on vaginal epithelial gene expression responses to Candida albicans // J. Biomed. Sci. 2012. V. 19. № 1. P. 58.
  26. 26. D'Alessandro M., Parolin C., Bukvicki D. et al. Probiotic and metabolic characterization of vaginal lactobacilli for a potential use in functional foods // Microorganisms. 2021. V. 9. № 4. P. 833.
  27. 27. Gladysheva I.V., Cherkasov S.V. Antibiofilm activity of cell-free supernatants of vaginal isolates of Corynebacterium amycolatum against Pseudomonas aeruginosa and Klebsiella pneumoniae // Arch. Microbiol. 2023. V. 205. № 4. P. 158.
  28. 28. Király L., Alén M., Korvola J., Horsmanheimo M. The effect of testosterone and anabolic steroids on the skin surface lipids and the population of Propionibacteria acnes in young postpubertal men // Acta Derm. Venereol. 1988. V. 68. № 1. P. 21.
  29. 29. Wang X., Zhou Y.C., Huang Y.C. et al. Estradiol stimulates the growth and biofilm formation of clinical Staphylococcus epidermidis // Zhonghua Yi Xue Za Zhi. 2016. V. 96. № 38. P. 3083.
  30. 30. Catron T.R., Swank A., Wehmas L.C. et al. Microbiota alter metabolism and mediate neurodevelopmental toxicity of 17β-estradiol // Sci. Rep. 2019. V. 9. № 1. P. 7064.
  31. 31. Lee S., Jung D.H., Park M. et al. The Effect of Lactobacillus gasseri BNR17 on postmenopausal symptoms in ovariectomized rats // J. Microbiol. Biotechnol. 2021. V. 31. № 9. P. 1281.
  32. 32. Otero M.C., Nader-Macías M.E. Inhibition of Staphylococcus aureus by H2O2-producing Lactobacillus gasseri isolated from the vaginal tract of cattle // Anim. Reprod. Sci. 2006. V. 96. № 1–2. P. 35.
  33. 33. Li X., Liu X., Yu S. Psychological stress-derived prolactin modulates occludin expression in vaginal epithelial cells to compromise barrier function // Cell. Physiol. Biochem. 2015. V. 37. № 1. P. 153.
  34. 34. Kaminsky L., Al-Sadi R., Ma T. Lactobacillus acidophilus causes enhancement of the intestinal tight junction barrier by a toll-like receptor-2-dependent increase in occluding // J. Allergy Clin. Immunol. 2022. V. 149. № 2. Suppl. P. AB99.
  35. 35. Cui Ya., Liu L., Dou X. et al. Lactobacillus reuteri ZJ617 maintains intestinal integrity via regulating tight junction, autophagy and apoptosis in mice challenged with lipopolysaccharide // Oncotarget. 2017. V. 8. P. 77489.
  36. 36. Zhang J., Sun Z., Jiang S. et al. Probiotic Bifidobacterium lactis V9 regulates the secretion of sex hormones in polycystic ovary syndrome patients through the gut-brain axis // mSystems. 2019. V. 4. № 2. P. e00017.
  37. 37. Yousuf M., Ali A., Khan P. et al. Insights into the antibacterial activity of prolactin-inducible protein against the standard and environmental MDR bacterial strains // Microorganisms. 2022. V. 10. № 3. P. 597.
  38. 38. Wostmann B.S. Morphology and physiology, endocrinology and biochemistry / Germfree and gnotobiotic animal models. London. CRC, 1996. P. 208.
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека